maker为什么电泳是6道

琼脂糖是从琼脂中提纯出来的,是由D-半乳糖和3,6脱水L-半乳糖连接而的一种线性多糖.琼脂糖凝胶的作是将干的琼脂糖悬浮缓冲液中,通常使用的浓度是1%-3%,加热煮沸至溶液变为澄清,注入模板后室温下冷却

阴极是－,而水电离生成H+和OH-OH-集中在阴极.胶体颗粒最内一层是氢氧化铁固体,称为胶核.胶核是氢氧化镁固体,是电中性的.胶核会吸附离子.溶液中的铁离子和氢氧根离子可与生成胶核的离子生成沉淀,最容

在确定的条件下,带电粒子在单位电场强度作用下,单位时间内移动的距离（即迁移率）为常数,是该电泳图谱带电粒子的物化特征性常数.不同带电粒子因所带电荷不同,或虽所带电荷相同但荷质比不同,在同一电场中电泳,

核糖体RNA的含量最高,因此这三条带最明显,可是其实不只是这三条,可能你们实验条件有限,只看到3条了,我实验中有时候能看到很多条

你好,有可能是分离胶没有摇匀,导致密度不均；也有可能是两侧上样量有差别导致压力不对称；或是胶没有配齐.希望能帮到您,望采纳

这要看你的工件底材是什么了.如果是铝材还有不锈钢就选择阳极电泳涂料.如果底材是容易氧化生锈的铁件或者合金件就要选阴极电泳了.还有你的问题中的价格应该都少一个零!选择阴极电泳和阳极电泳除了底材外还跟你产

胶体粒子本身是不带电的,但是有很多极性基团,可以吸附溶液中的阴离子或者阳离子,电泳是使这个吸附离子后的胶体粒子定向移动聚集!

带电颗粒在电场作用下,向着与其电性相反的电极移动,称为电泳(electrophoresis,EP).利用带电粒子在电场中移动速度不同而达到分离的技术称为电泳技术.1937年瑞典学者A.W.K.蒂塞利乌

提问者迷糊了不是?呵呵!我来告诉你：首先,你的提法就是错误的.阳极液中加入的中和剂,这里根本不是起中和作用.只是起导电作用.没有电解质存在,纯水的导电率很低.通电后无电流产生,电泳无法进行.电泳生产过

一般这种情况是上样量太大的缘故,你做PAGE之前有对样品蛋白进行初步定量麽?SDS-PAGE对上扬的蛋白量是有要求的,上样过大就会跑成一片看不到条带.再问：会不会是loadingbuffer放的太多，

基因组DNA会在你抽提过程中发生断裂,形成几十至几百kb的大片段.如果你跑的是比较浓的胶的话,无法区分不同大小的DNA,所以看起来像是一条带.你可以配点0.6%的胶加lamdahindIIImarke

胶体粒子带有电荷,在外加电流作用下,会定向移动,电泳也是判断胶体的特性之一.

可能的原因：1.配胶时梳子没摆正或拔梳子时使点样孔不整齐,2.电压太低或太高,3.电泳缓冲液离子浓度不合适,4.上样量过多或样品杂质多

“从头拖到尾,另外一对引物就能做出来”说明不是引物之间形成二聚体,而是第一对引物的设计有问题（特异性很差）.如果一定要扩增那个区,建议引物的位置向两边放一放.如果你没有好的设计软件,建议到Primer

蛋白质是有各种氨基酸组成的,做电泳试验是为了区分其中的不同氨基酸,根据每一个不同的峰值和波线还可以大概估算一下一些氨基酸的含量,可以用来评价该蛋白质的性质等等.

开始我以为是退火温度问题,但是你说做了两次,第一次没有条带,第二次有一条没有,这说明你加样有问题,还有你为什么要同一个cDNA要做六个PCR呢?还是lz说的不清楚?同样的条件同样的样品没理由会六条中只

胶体微粒的直径在1到100纳米,颗粒小,所以表面积很大.表面积大的物质都有很强的吸附能力,所以胶体威力吸附溶液中的阴离子或阳离子,从而带电荷,在电场作用下发生定向移动,即为电泳现象.

主要是增加防腐蚀能力.简单的工艺流程：预脱脂-脱脂-水洗1-水洗2-表调-磷化-水洗3-纯水洗1-纯水洗2-电泳-UF1-UF2-纯水洗-下线.

后加电泳液的话液体溢过胶体时的流动容易把蛋白质样本冲出其所在的井.而且这样做容易在胶体四周留下液体无法进入的空隙,可能影响电泳效果.应该是这样

NO,储藏液一般是母液,用的时候需要相应的稀释.所谓母液就是高浓度的储藏液.浓度低容易变质.电泳储液一般50X,用的时候要稀释到1X,也就是按1ml50X储液+49ml去离子无菌水的比例混匀.